| 厚積薄發(fā) 類器官技術(shù)建立在干細胞技術(shù)以及經(jīng)典發(fā)育生物學(xué)和細胞混合實驗的基礎(chǔ)之上;類器官的出現(xiàn)無疑是對干細胞研究不懈探索的驚喜回饋。 腸上皮是成年哺乳動物中自我更新最快的組織,自 2007 年,Hans Clevers 實驗室就通過譜系追蹤 (lineage tracing) 發(fā)現(xiàn)腸道 Wnt 靶基因中隱窩基底循環(huán)柱狀細胞表達的 Lgr5 (leucine-rich-repeat-containing G-protein-coupled receptor 5, Gpr49) 可作為腸和結(jié)腸的干細胞的成體干細胞標(biāo)志物,這也就是大名鼎鼎的 Lgr5+ 細胞。 2009 年,Hans Clevers 和 Toshiro Sato 用來源于小鼠腸道的成體干細胞培育出一個微型腸道 (Mini-guts) 類器官,開啟了類器官技術(shù)的發(fā)展的“新紀(jì)元”。 圖 1. 類器官培養(yǎng)發(fā)展時間軸[2]  腸道類器官技術(shù)已被廣泛應(yīng)用于多種領(lǐng)域,包括疾病建模、藥物開發(fā)和篩選、宿主-微生物相互作用、腸道生物學(xué)與發(fā)育等。 腸道類器官的 “養(yǎng)成記” 3D 腸類器官由一個封閉的循環(huán)中空腔組成,內(nèi)襯一層腸上皮細胞系。腸上皮的分化細胞系,包括腸上皮細胞,腸內(nèi)分泌細胞和杯狀 (Paneth) 細胞,排列在絨毛狀區(qū)內(nèi)。 腸類器官的發(fā)育類器官可來源于器官限制成體干細胞 (ASCs) 和多能干細胞 (PSCs) 兩種干細胞。這兩種干細胞來源產(chǎn)生的類器官包含體內(nèi)發(fā)現(xiàn)的所有腸上皮細胞類型,比例和排列相似。 圖 2. 體外培養(yǎng) ASC 來源的腸類器官[3] 培養(yǎng)類器官的主要成分是細胞外基質(zhì)和培養(yǎng)基,培養(yǎng)基中添加促腸道發(fā)育的生長因子。其中,細胞外基質(zhì) (ECM) 為干細胞的粘附、生長和分化提供了必需的結(jié)構(gòu)支持和生化誘因。類器官的形成和生長在很大程度上依賴于培養(yǎng)基成分,這些成分構(gòu)成了十分接近體內(nèi)干細胞生態(tài)位 (Niche) 的信號通路,以維持干細胞的功能,促進其擴展和分化為器官的特定細胞類型。 如果把腸道類器官培養(yǎng)當(dāng)成是養(yǎng)成游戲,那么該怎么喂養(yǎng)呢,“定食” 還是“DIY 自助餐”? 圖 3. 體外培養(yǎng) PSC 來源的腸類器官[3] ■ 基礎(chǔ)套餐來一套: 腸道類器官培養(yǎng)基的關(guān)鍵成分包括 Wnt-3a (W)、表皮生長因子 (EGF) (E)、Noggin (N) 和 R-spondin-1 (R),統(tǒng)稱為 WENR 培養(yǎng)基。在培養(yǎng)基中有序地添加這些生長因子可調(diào)控干細胞生態(tài)位信號通路 (包括 Wnt、骨形態(tài)發(fā)生蛋白 (BMP) 和 Notch 信號通路),誘導(dǎo)腸道干細胞 (ISCs) 自我更新、增殖和分化。 ■ “自助”更有它的妙: 也有一些研究表明,向 ENR 培養(yǎng)基 (包含 EGF + Noggin + R-spondin-1) 中加入其它成分,以誘導(dǎo)干細胞走向特定的分化命運。 例如,引入兩種小分子的組合,如 CHIR99021 + Valproic acid 或者是 LDN-193189 + CHIR99021,可協(xié)同促進 Lgr5+ ISCs 在自我更新和未分化狀態(tài)下的維持,得到富含 ISCs 的培養(yǎng)。 通過補充 DAPT + CHIR99021、Valproic acid + IWP-2 或 DAPT + IWP-2 的 ENR 培養(yǎng)基培養(yǎng)可獲得分化表型,這些分子相互配合誘導(dǎo) ISCs 直接分化為 Paneth 細胞 (杯狀細胞) 及腸細胞和分泌細胞譜系 (腸內(nèi)分泌細胞)。也有人認為,DAPT 或 BMP 分子的加入足以促進 ISC 分化并產(chǎn)生多譜系腸類器官。 雖然關(guān)于類器官培養(yǎng)基的組成有詳細的綜述,但不同方案的成分有時會存在差異,在培養(yǎng)技術(shù)中需要大量的試驗和摸索,以確定劑量和時機,達到預(yù)期結(jié)果。 有說有練真把式 ,培養(yǎng)基 DIY! 2020 年 3 月,類器官“鼻祖” Hans Clevers 的團隊再在 Science 上發(fā)表大作:SARS-CoV-2 productively infects human gut enterocytes,揭示了新型冠狀病毒對人類腸道的有效感染。他們靈活運用腸道類器官的培養(yǎng)條件,將病毒對人類腸道的感染可視化。 hSIO (human small intestinal organoids; 人類小腸類器官) 由原代腸道上皮干細胞建立,通過符合倫理規(guī)范途徑獲得人類腸道組織樣本。他們設(shè)定了四種不同培養(yǎng)(EXP、DIF、DIF-BMP、EEC)條件: EXP:在 Wnt EXP (Expansion medium) 中生長的 hSIO 絕大多數(shù)由干細胞和腸細胞祖細胞組成,與 Wnt 條件培養(yǎng)基不同,培養(yǎng)基中添加 Wnt 替代物 (U-Protein Express)。 DIF:在 ENR 中實現(xiàn)了一般分化,稱為 DIF (differentiation medium),在 DIF 培養(yǎng)基中生長的類器官含有腸細胞、杯狀細胞和少量腸內(nèi)分泌細胞 (EEC)。 DIF+BMP:通過從 ENR 中除去 Noggin 并添加 BMP-2/BMP-4 激活 BMP,導(dǎo)致進一步成熟。 EEC: 在 DIF + BMP 的條件下,用強力霉素 (Doxycycline) 在 ENR 培養(yǎng)基中穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的載體中誘導(dǎo) NeuroG3 的表達,以誘導(dǎo) EEC 數(shù)量增加。 如圖 3 所示,四種培養(yǎng)條件下生長的 hSIO 暴露于 SARS-CoV 和 SARS-CoV-2 2 種病毒。在所有培養(yǎng)條件下,兩種病毒的傳染性病毒顆粒和病毒 RNA 的滴度均顯著增加。 圖 4:SARS-CoV 和 SARS-CoV-2 在 hSIO 中復(fù)制[12] SARS-CoV(藍)SARS-CoV-2(紅)感染后 24、48 和 60 小時,測定裂解的類器官活病毒滴度。 為了確定病毒目標(biāo)細胞類型,對 hSIO 進行了共聚焦分析,不同的培養(yǎng)條件下共聚焦分析顯示,SARS-CoV-2 的目標(biāo)細胞為增殖的腸上皮細胞祖細胞 (EXP 條件下) 或有絲分裂后的腸細胞 (DIF 條件下),而腸內(nèi)分泌細胞幾乎沒有感染。 圖 5. SARS-CoV-2 感染 hSIO 的共聚焦分析[12] 類器官腸上皮細胞刷狀緣肌動蛋白通過 Phalloidin 標(biāo)記 (綠色),DAPI 標(biāo)記細胞核 (藍色),病毒 dsRNA 染色顯示感染細胞。A. 增殖的細胞在擴張的類器官中體現(xiàn),Ki67 標(biāo)記增殖細胞 (紅色);B. 腸上皮細胞在分化的類器官中體現(xiàn),APOA1 標(biāo)記有絲分裂后的腸細胞 (紅色) 看到這里,不得不稱贊一句 Hans Clevers 類器官培養(yǎng)玩兒得真溜!絕絕子! MCE 的所有產(chǎn)品僅用作科學(xué)研究或藥證申報,我們不為任何個人用途提供產(chǎn)品和服務(wù)。 
 參考文獻 1. Nick Barker, Peter J Peters, Hans Clevers, et al. Identification of stem cells in small intestine and colon by marker gene Lgr5. Nature. 2007 Oct 25;449(7165):1003-7.2. Claudia Corrò, Vivian S.W. Li, et al. A brief history of organoids. Am J Physiol Cell Physiol. 2020 Jul 1;319(1):C151-C165. 3. Sara Rahmani, Tohid F. Didar, et al. Intestinal organoids: A new paradigm for engineering intestinal epithelium in vitro. Biomaterials. 2019 Feb;194:195-214. 4. Aliya Fatehullah, Nick Barker, et al. Organoids as an in vitro model of human development and disease. 5. Mo Li, Juan C Izpisua Belmonte. Organoids — Preclinical Models of Human Disease. N Engl J Med. 2019 Feb 7;380(6):569-579. 6. Joseph Azar, Mohamed Al-Sayegh, Wassim Abou-Kheir, et al. The Use of Stem Cell-Derived Organoids in Disease Modeling: An Update. Int J Mol Sci. 2021 Jul 17;22(14):7667. 7. HansClevers. Modeling Development and Disease with Organoids. Cell. 2016 Jun 16;165(7):1586-1597. 8. Kathryn L Fair, Jennifer Colquhoun, Nicholas R F Hannan. Intestinal organoids for modelling intestinal development and disease. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 2018 Jul 5;373(1750):20170217. 9. Toshiro Sato, Hans Clevers, et al. Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature. 2009 May 14;459(7244):262-5. 10. Madeline A Lancaster, Juergen A Knoblich. Organogenesis in a dish: modeling development and disease using organoid technologies. Science. 2014 Jul 18;345(6194):1247125. 11. Mo Li, Juan C Izpisua Belmonte. Organoids - Preclinical Models of Human Disease. N Engl J Med. 2019 Feb 7;380(6):569-579. 12. Mart M Lamers, Hans Clevers, et al. SARS-CoV-2 productively infects human gut enterocytes. Science . 2020 Jul 3;369(6499):50-54. | 
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