實(shí)驗(yàn)原理 考馬斯亮藍(lán)(Coomassie Brilliant Blue)法測定蛋白質(zhì)濃度,是利用蛋白質(zhì)―染料結(jié)合的原理,定量的測定微量蛋白濃度的快速、靈敏的方法。這種蛋白質(zhì)測定法具有超過其他幾種方法的突出優(yōu)點(diǎn),因而正在得到廣泛的應(yīng)用。這一方法是目前靈敏度最高的蛋白質(zhì)測定法。 考馬斯亮蘭G-250染料,在酸性溶液中與蛋白質(zhì)結(jié)合,使染料的最大吸收峰(lmax)的位置,由465 nm變?yōu)?595 nm,溶液的顏色也由棕黑色變?yōu)樘m色。通過測定595 nm處光吸收的增加量可知與其結(jié)合蛋白質(zhì)的量。研究發(fā)現(xiàn),染料主要是與蛋白質(zhì)中的堿性氨基酸(特別是精氨酸)和芳香族氨基酸殘基相結(jié)合。 考馬斯亮藍(lán)染色法的突出優(yōu)點(diǎn)是: (1)靈敏度高,據(jù)估計(jì)比Lowry法約高四倍,其最低蛋白質(zhì)檢測量可達(dá)1 mg。這是因?yàn)榈鞍踪|(zhì)與染料結(jié)合后產(chǎn)生的顏色變化很大,蛋白質(zhì)-染料復(fù)合物有更高的消光系數(shù),因而光吸收值隨蛋白質(zhì)濃度的變化比Lowry法要大的多。 (2)測定快速、簡便,只需加一種試劑。完成一個(gè)樣品的測定,只需要5分鐘左右。由于染料與蛋白質(zhì)結(jié)合的過程,大約只要2分鐘即可完成,其顏色可以在1小時(shí)內(nèi)保持穩(wěn)定,且在5分鐘至20分鐘之間,顏色的穩(wěn)定性最好。因而完全不用像Lowry法那樣費(fèi)時(shí)和嚴(yán)格地控制時(shí)間。 (3)干擾物質(zhì)少。如干擾Lowry法的K+、Na+、Mg2+離子、Tris緩沖液、糖和蔗糖、甘油、巰基乙醇、EDTA等均不干擾此測定法。 此法的缺點(diǎn)是: (1)由于各種蛋白質(zhì)中的精氨酸和芳香族氨基酸的含量不同,因此考馬斯亮藍(lán)染色法用于不同蛋白質(zhì)測定時(shí)有較大的偏差,在制作標(biāo)準(zhǔn)曲線時(shí)通常選用g—球蛋白為標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì),以減少這方面的偏差。 (2)仍有一些物質(zhì)干擾此法的測定,主要的干擾物質(zhì)有:去污劑、 Triton X-100、十二烷基硫酸鈉(SDS)等。 試劑與器材 一、試劑 考馬斯亮藍(lán)試劑: 考馬斯亮藍(lán)G―250 100 mg溶于50 mL 95%乙醇中,加入100 mL 85%磷酸,用蒸餾水稀釋至1000 mL。 二、標(biāo)準(zhǔn)和待測蛋白質(zhì)溶液 1. 標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)溶液 結(jié)晶牛血清蛋白,預(yù)先經(jīng)微量凱氏定氮法測定蛋白氮含量,根據(jù)其純度用0.15 mol/L NaCl配制成1 mg/mL蛋白溶液。 2. 待測蛋白質(zhì)溶液。 人血清,使用前用0.15 mol/L NaCl稀釋200倍。 三、器材 試管1.5×15 cm(×6),試管架,移液管管0.5 mL(×2);1 mL(×2);5 mL(×1);恒溫水浴;分光光度計(jì)。 操作方法 一、制作標(biāo)準(zhǔn)曲線 取7支試管,按下表平行操作。
繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線:以A595 nm為縱坐標(biāo),標(biāo)準(zhǔn)蛋白含量為橫坐標(biāo),在坐標(biāo)紙上繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。 二、未知樣品蛋白質(zhì)濃度測定 測定方法同上,取合適的未知樣品體積,使其測定值在標(biāo)準(zhǔn)曲線的直線范圍內(nèi)。根據(jù)所測定的A595 nm值,在標(biāo)準(zhǔn)曲線上查出其相當(dāng)于標(biāo)準(zhǔn)蛋白的量,從而計(jì)算出未知樣品的蛋白質(zhì)濃度(mg/mL)。 注意事項(xiàng) 在試劑加入后的5-20 min內(nèi)測定光吸收,因?yàn)樵谶@段時(shí)間內(nèi)顏色是最穩(wěn)定的。 測定中,蛋白-染料復(fù)合物會(huì)有少部分吸附于比色杯壁上,測定完后可用乙醇將藍(lán)色的比色杯洗干凈。 利用考馬斯亮藍(lán)法分析蛋白必須要掌握好分光光度計(jì)的正確使用,重復(fù)測定吸光度時(shí),比色杯一定要沖洗干凈,制作蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線的時(shí)候,蛋白標(biāo)準(zhǔn)品最好是從低濃度到高濃度測定,防止誤差。 |
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