| 牛磺酸對大鼠急性運(yùn)動后自由基代謝、膜流動性及鈣轉(zhuǎn)運(yùn)變化的影響 中國運(yùn)動醫(yī)學(xué)雜志1999年第1期 張宜龍 陳吉棣 提要 50只雄性Wistar大鼠(80-100g),隨機(jī)分為對照組(G1),急性運(yùn)動組(G2),急性運(yùn)動+?;撬峤M(G3),力竭運(yùn)動組(G4),力竭運(yùn)動+?;撬峤M(G5)。?;撬嵫a(bǔ)充方式為每日灌服1次(500mg/kg)。喂養(yǎng)2周后,進(jìn)行負(fù)重游泳,測定血液、線粒體和肌漿網(wǎng)各生化指標(biāo)變化。結(jié)果顯示“?;撬嵊性黾哟笫笥斡玖邥r間的趨勢(0.05<P<0.10);運(yùn)動后即刻,G3組BUN明顯低于G2組(p<0.05);G3組RBC、血漿及心肌線粒體MDA含量明顯低于G2組(P<0.05);G3組RBC及心肌線粒體GSH_Px活力明顯高于G2組(P<0.05);G3組心肌線粒體膜熒光偏振度P明顯低于G2組(P<0.05)。G3組SR ca2+-ATPase活性和攝鈣率明顯高于G2組(P<0.05)。力竭后24小時,G5組RBC、血漿及心肌線粒體MDA含量明顯低于G4組(P<0.05)。以上結(jié)果表明,牛磺酸可以通過抗自由基損傷,穩(wěn)定生物膜和調(diào)節(jié)鈣轉(zhuǎn)運(yùn)等途徑對抗運(yùn)動性疲勞。 關(guān)鍵詞:牛磺酸 運(yùn)動 自由基 生物膜 鈣 通過以前實(shí)驗(yàn)研究,我們得知,?;撬峥梢詼p輕運(yùn)動造成的脂質(zhì)過氧化反應(yīng),提高運(yùn)動員的運(yùn)動能力[1]。本研究圍繞自由基代謝、生物膜流動性、鈣離子轉(zhuǎn)運(yùn)變化,研究?;撬釋毙赃\(yùn)動后血液、線粒體和肌漿網(wǎng)各生化指標(biāo)的影響,探討?;撬峥惯\(yùn)動性疲勞的亞細(xì)胞機(jī)制。 1. 材料和方法 1.1 實(shí)驗(yàn)動物:選用雄性Wistar大鼠50只,體重80~100克,由北京醫(yī)科大學(xué)動物部提供。常規(guī)分籠飼養(yǎng),自由飲水進(jìn)食。 1.2 分組、用藥及運(yùn)動方式: 大鼠購進(jìn)后,先適應(yīng)性喂養(yǎng)3天,同時每天進(jìn)行30分鐘適應(yīng)性游泳訓(xùn)練1次,然后按體重大小隨機(jī)分為5組: (1)對照組(G1組)10只;(2)急性運(yùn)動組(G2組)10只;(3)急性運(yùn)動+牛磺酸組(G3組)10只;(4)力竭運(yùn)動組(G4組)10只;(5)力竭運(yùn)動+牛磺酸組(G5組)10只。?;撬嵫a(bǔ)充方式為G3和G5組大鼠每日灌服牛磺酸1次,劑量為500mg/kg;G1、G2、G4組大鼠每日灌服等量蒸餾水(灌胃體積為10ml/kg bW)。 經(jīng)2周喂養(yǎng)后,各運(yùn)動組大鼠負(fù)其自身體重的3%進(jìn)行游泳,游泳池呈圓形,內(nèi)壁光滑,直徑45厘米,水深70厘米,水溫35±1度。游泳分兩日進(jìn)行,第1日,G4和G5組大鼠游泳至力竭(在水下10秒不能上浮)后撈出;次日,G2和G3組大鼠游泳2小時,如在游泳期間發(fā)現(xiàn)有力竭表現(xiàn),撈出水面休息5分鐘后繼續(xù)游泳至滿2小時。 1.3 樣本收集與處理: G2和G3組大鼠游泳運(yùn)動后即刻處死,同時處死對照組大鼠與力竭后24小時的G4和G5組大鼠。 樣本收集:腹腔注射2%戊巴比妥-生理鹽水麻醉(5ml/Kg BW),腹主動脈取血后摘取心臟分裝備用。 每只大鼠可得全血約5ml,分裝3只試管:第1管為EDTA抗凝管(10%EDTA10μl),注入1ml全血后混勻,4℃離心制備血漿,用于血氨測定;第2管為NaF(1%NaF0.48ml),新鮮血20μl,混勻,用于血乳酸測定;第3管為肝素抗凝管(20單位/ml),全血3ml,注入后混勻,4℃離心,分離血漿與RBC。血漿用于BUN及MDA測定,RBC用于SOD、GSH_Px、MDA測定。 摘取心臟后,用差速離心法分離心肌細(xì)胞線粒體和肌漿網(wǎng)(SR)[2,3]。 1.4 觀測指標(biāo)及方法: 各組大鼠體重變化。 血氨測定:Ammonia Reagent_Enzymatic Method 氨試劑盒由中國科學(xué)院生物物理所中生公司提供 血尿素氮測定:脲酶吲哚酚-終點(diǎn)比色法。尿素氮試劑盒由北京化工廠臨床試劑分廠提供 血乳酸測定:血乳酸超微量改良法[4] 全血RBC-SOD測定:方法同前[1] 全血RBC-GSH_Px測定:方法同前[1] 全血RBC及血漿MDA測定:方法同前[1] 心肌線粒體膜脂流動性:DPH探針標(biāo)記法[5] 心肌線粒體Ca2+含量測定:原子吸收法[2] 心肌線粒體SOD,GSH_Px,MDA測定:方法同前 線粒體蛋白定量:Bradford法[6] 肌肉肌漿網(wǎng)蛋白定量:Lowry法[7] 肌漿網(wǎng)鈣泵活性測定:參照J(rèn)ones等的方法[3] 肌漿網(wǎng)鈣泵攝Ca2+率的測定[8] 1.5 統(tǒng)計方法:t檢驗(yàn) 2 實(shí)驗(yàn)結(jié)果 2.1 一般觀察指標(biāo) 2.1.1 體重變化(表1) 2.1.2 ?;撬釋Υ笫筮\(yùn)動能力的影響 表1 大鼠體重的變化 table 1 Changes of body weight of rats 
 兩組力竭運(yùn)動大鼠平均游泳時間無顯著性差異(P>0.05),但給予牛磺酸有增加大鼠游泳力竭時間的趨勢(0.05<P<0.10)(表2)。 表2 大鼠力竭游泳時間 table 2 Changes of the exhaustive swimming time of rats 
 note:G4:Exhausted group G5:taurine + exhausted group 2.2 血液NH3、BLA、BUN的變化 運(yùn)動后即刻,G2組大鼠血NH3、BLA及BUN均顯著高于對照組水平,G3組血NH3、BLA亦顯著增加,且與G2組無顯著性差異,而BUN含量與對照組比較則無顯著性差異;運(yùn)動后24小時,G4和G5組大鼠血NH3、BLA、BUN與對照組比較無顯著性差異(P>0.05)(表3,4)。 2.3 血液MDA、SOD、GSH_Px的變化 表3 運(yùn)動后即刻大鼠血液NH3、BLA、BUN的變化 table 3 Changes of blood NH3、BLA and BUN contents of rats immediately after swimming 
 Note:G1:control group G2:acute exercise group G3:taurine + acute exercise group*:p<0.05,compared with G1 #:p<0.05,compared with G2 表4 運(yùn)動后24小時大鼠血液NH3、BLA、BUN的變化 table 4 Changes of blood NH3、BLA and BUN contents of rats 24h after swimming 
 表5 運(yùn)動后即刻大鼠血液SOD、GSH_Px活性和MDA含量變化 table 5 Changes of blood SOD and GSH_Px activities and the MDA content of rats immediately after swimming 
 *:P<0.05,compared with G1 #:P<0.05,compared with G2 表6 運(yùn)動后24小時血SOD和GSH_Px活性及MDA含量的變化 table 6 Changes of blood SOD and GSH_Px activities and the MDA content of rats24h after acute exercise 
 *:P<0.05,compared with G1 #:P<0.05,compared with G4 運(yùn)動后即刻,G2和G3組大鼠RBC及血漿MDA含量均明顯高于對照組水平,但給予?;撬峥擅黠@抑制其升高幅度;運(yùn)動后24小時,G4組RBC及血漿MDA含量仍明顯高于對照組,而G5組RBC-MDA含量與對照組比較已無顯著性差異,血漿MDA雖高于對照組水平,但亦明顯低于G4組運(yùn)動后水平(P<0.05)(表5,6)。 各組大鼠運(yùn)動后即刻及24小時RBC-SOD活力與對照組均無顯著性差異(P>0.05)(表5,6)。 運(yùn)動后即刻,G2和G3組大鼠RBC-GSH_Px活力明顯高于對照組水平,給予?;撬峥梢燥@著增加RBC-GSH_Px的升高幅度;運(yùn)動后24小時,G4組大鼠RBC-GSH_Px活力恢復(fù)至對照組水平,而G5組RBC-GSH_Px仍處于較高水平,且明顯高于對照組及G4組運(yùn)動后24小時的RBC-GSH_Px活力(P<0.05)(表5,6)。 2.4 線粒體各指標(biāo)變化 運(yùn)動后即刻,G2和G3組大鼠線粒體MDA含量均顯著高于對照組水平,給予?;撬峥梢燥@著抑制運(yùn)動后線粒體MDA的升高幅度;運(yùn)動后24小時,G4組大鼠線粒體MDA含量明顯高于對照組,而G5組大鼠線粒體MDA雖然也處于較高水平(0.05<P<0.10),但明顯低于G4組運(yùn)動后水平,且與對照組比較已無顯著性差異(P>0.05)(表7,8)。 表7 運(yùn)動后即刻大鼠心肌線粒體SOD、GSH_Px活性和MDA、Ca2+含量變化 Table 7 Changes of myocardial mitochondria membrane SOD GSH_Px activities and MDA,Ca2+ contents of rats immediately after swimming 
 *:P<0.05,compared with G1?。?P<0.05,compared with G2 表8 運(yùn)動后24小時大鼠心肌線粒體SOD、GSH_Px活性和MDA、Ca2+含量變化 table 8 Changes of myocardial mitochondria membrane SOD、GSH_Px activities and MDA、Ca2+ contents of rats 24h after swimming 
 *:P<0.05,compared with G1?。?P<0.05,compared with G4 運(yùn)動后即刻,G2組大鼠線粒體GSH_Px活力明顯低于對照組,給予?;撬崦黠@抑制了這種降低作用;運(yùn)動后24小時,G4組大鼠線粒體GSH_Px活力基本恢復(fù)至對照水平,G5組則較對照組有增高趨勢,且明顯高于G4組運(yùn)動后24小時水平(P<0.05)(表7,8)。 運(yùn)動后即刻,G2組和G3組大鼠線粒體膜熒光偏振值P明顯高于對照組水平,給予牛磺酸可以顯著降低其升高幅度;運(yùn)動后24小時,G4組大鼠熒光偏振值P明顯高于對照組,而G5組則恢復(fù)至正常水平,且明顯低于G4組運(yùn)動后24小時線粒體膜P值(P<0.05)(表7,8)。 運(yùn)動后即刻及24小時,各組大鼠線粒體SOD活力、Ca2+含量與對照組均無顯著性差異(P>0.05)(表7,8)。 2.5 肌漿網(wǎng)鈣泵功能的變化 急性運(yùn)動后即刻,G2和G3組大鼠SR Ca2+-ATpase活性和ATP依賴的攝鈣率明顯下降,給予?;撬崮苊黠@抑制SR ca2+-ATPase活性的降低,提高SR對鈣的攝取率;力竭后24小時,G4和G5組大鼠SR ca2+-ATPase活性和ATP依賴的攝鈣率與對照組比較已無顯著性差異(P>0.05)(表9,10)。 表9 補(bǔ)充?;撬釋Υ笫筮\(yùn)動后即刻SRCa2+_ATPase和鈣攝取率的影響 table 9 Effects of taurine on SR Ca2+-ATPase and the rate of calcium uptake of rat hearts immediately after swimming 
 Note:*:p<0.05,compared with G1 #:p<0.05,compared with G2 表10 補(bǔ)充牛磺酸對大鼠運(yùn)動后24小時SRCa2+,ATPase和鈣攝取率的影響 table 10 Effects of taurine on SR Ca2+,ATPase and the rate of calcium uptake of rat hearts 24h after swimming 
 3 討論 以耗竭性游泳為運(yùn)動模型進(jìn)行運(yùn)動疲勞機(jī)制的研究已經(jīng)被國內(nèi)外很多學(xué)者采用[9,10]。但考慮到耗竭運(yùn)動后即刻各大鼠體內(nèi)生化指標(biāo)可能發(fā)生比較類似的變化,難以對?;撬岬倪\(yùn)動保護(hù)作用進(jìn)行觀測,本研究選用定量游泳方式……負(fù)重3%游泳2小時,來觀察?;撬釋\(yùn)動后即刻各指標(biāo)變化的影響。而對耗竭性游泳大鼠進(jìn)行恢復(fù)期觀測,即?;撬釋\(yùn)動后24小時各指標(biāo)變化的影響。同時記錄游泳耗竭時間,評估運(yùn)動能力。 本研究結(jié)果顯示,兩組耗竭性游泳大鼠平均游泳時間無顯著性差異(P>0.05),但給予?;撬嵊性黾哟笫笥斡玖邥r間的趨勢(0.05<P<0.10)??赡馨▋煞矫嬉蛩兀阂环矫妫笫筮\(yùn)動能力的個體差異大,實(shí)驗(yàn)樣本例數(shù)仍較少,造成實(shí)驗(yàn)標(biāo)準(zhǔn)差較大;另一方面,單純給予?;撬釋Υ笫筮\(yùn)動能力的提高作用可能不如同時結(jié)合運(yùn)動訓(xùn)練明顯。侯等人的實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,運(yùn)動+?;撬崮茱@著提高大鼠運(yùn)動能力,使游泳力竭時間提高近1倍(93.25min vs 47.10min)[11]。 血乳酸、血氨作為肌肉活動的重要代謝產(chǎn)物,是重要的疲勞物質(zhì)。其在體內(nèi)的蓄積將導(dǎo)致內(nèi)環(huán)境的紊亂,從而影響肌肉的收縮功能。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,大鼠經(jīng)2小時負(fù)重游泳后,血乳酸和血氨濃度均比對照組明顯提高(P<0.05),提示此運(yùn)動量可使大鼠產(chǎn)生一定程度的疲勞。給予牛磺酸未見對運(yùn)動中血乳酸、血氨的生成有明顯的抑制作用。 BUN是蛋白質(zhì)代謝的重要產(chǎn)物。蛋白質(zhì)雖為機(jī)體的主要結(jié)構(gòu)部分,但在一定條件下也參與能量代謝。運(yùn)動后,血BUN的增量大小,提示機(jī)體利用蛋白質(zhì)供能的程度。蛋白質(zhì)作為能源儲備被利用時,其被利用的程度則是機(jī)體適應(yīng)力大小的指標(biāo)之一。機(jī)體的適應(yīng)力越強(qiáng),所動用的蛋白質(zhì)就越少,因而體內(nèi)BUN的生成也就越少。反之,機(jī)體的適應(yīng)力弱時,則被動用的蛋白質(zhì)就多。大鼠經(jīng)2小時負(fù)重游泳后,血BUN含量明顯增加,給予?;撬釋UN的升高有明顯抑制作用,使運(yùn)動后BUN含量與對照組比較已無顯著性差異。說明牛磺酸可以降低大鼠運(yùn)動時的蛋白質(zhì)供能程度,提示牛磺酸具有提高機(jī)體適應(yīng)能力的作用。力竭運(yùn)動后24小時,各組大鼠血BUN水平與對照組比較均無顯著性差異。 MDA作為自由基與不飽和脂肪酸反應(yīng)生成的代謝產(chǎn)物,常被用來間接反應(yīng)機(jī)體的自由基代謝的變化。研究表明,運(yùn)動可導(dǎo)致體內(nèi)脂質(zhì)過氧化物水平增高[12]。本研究分別對血漿、RBC和心肌細(xì)胞線粒體的MDA含量進(jìn)行了測定,結(jié)果發(fā)現(xiàn):大鼠負(fù)重游泳后即刻及力竭后24小時,三者均顯著性增高(P<0.05),給予?;撬峥梢悦黠@阻斷體內(nèi)MDA的生成。運(yùn)動后即刻,運(yùn)動+?;撬峤M大鼠RBC及心肌細(xì)胞線粒體MDA含量較單純運(yùn)動組顯著降低;力竭后24小時,給予?;撬岬拇笫?,無論血漿、RBC還是線粒體,MDA含量均明顯低于單純力竭組大鼠,其RBC和線粒體MDA含量與對照組比較已無顯著性差異。表明?;撬峥捎行У貙惯\(yùn)動引起的脂質(zhì)過氧化,對運(yùn)動機(jī)體發(fā)揮重要的保護(hù)作用。Morales等人的體外研究發(fā)現(xiàn),牛磺酸可以明顯減少脂質(zhì)過氧化產(chǎn)物MDA的形成,減少生物膜損傷[13—16]。侯等人的研究也發(fā)現(xiàn),無論是在血漿還是在心肌,?;撬岫伎梢宰钄噙\(yùn)動所致的MDA生成[17]。 生物體不斷產(chǎn)生自由基,引起脂質(zhì)過氧化作用加強(qiáng)的同時,自由基清除系統(tǒng)的活性也在不斷變化。但由于自由基損傷的非特異性,對于不同的運(yùn)動條件,以及不同的組織和器官,機(jī)體自由基代謝和抗氧化酶的變化是有差異的[18—19]。本研究并未發(fā)現(xiàn)大鼠急性負(fù)荷游泳后血液及心肌線粒體SOD活性的變化。 GSH_Px是機(jī)體又一種重要的抗氧化酶,分解過氧化氫和脂質(zhì)過氧化物,阻止自由基氧化鏈?zhǔn)椒磻?yīng)。本研究結(jié)果表明,大鼠游泳后即刻,RBC_GSH_Px活性顯著高于對照組,?;撬釋ζ渖哂忻黠@的促進(jìn)作用。甚至力竭后24小時,給予牛磺酸的大鼠RBC-GSH_Px活力仍顯著高于對照組水平。心肌線粒體GSH_Px的測定表明,經(jīng)2小時負(fù)重游泳后,大鼠心肌線粒體GSH_Px活力明顯降低,與MDA的變化成反平行關(guān)系,可能是與線粒體自由基代謝水平較高,造成自由基生成過多,并對蛋白質(zhì)產(chǎn)生毒性作用有關(guān)。給予?;撬峥梢悦黠@抑制心肌線粒體GSH_Px的這種降低作用,使運(yùn)動后即刻,心肌線粒體GSH_Px與對照組無顯著性差異。另外,?;撬峥擅黠@促進(jìn)力竭運(yùn)動后心肌線粒體GSH_Px活力的恢復(fù),使力竭后24小時心肌線粒體GSH_Px水平顯著高于對照組水平,?;撬釋SH_Px的這種作用機(jī)制尚需進(jìn)一步研究。 脂質(zhì)過氧化物對生物膜造成許多不良影響[20]。已有研究表明,急性運(yùn)動誘發(fā)內(nèi)源性自由基生成增多及脂質(zhì)過氧化反應(yīng)增強(qiáng),構(gòu)成對細(xì)胞膜系統(tǒng)結(jié)構(gòu)的損傷,可能與運(yùn)動性損傷和運(yùn)動性疲勞的形成有關(guān)[21—24]。本研究用穩(wěn)態(tài)熒光偏振技術(shù),對負(fù)重游泳的大鼠心肌線粒體膜進(jìn)行研究發(fā)現(xiàn),無論在運(yùn)動后即刻,還是力竭后24小時,大鼠心肌線粒體膜流動性均顯著下降。給予牛磺酸可以明顯抑制膜流動性的降低,甚至力竭運(yùn)動后24小時,?;撬峤M大鼠心肌線粒體膜流動性已基本恢復(fù)至對照組水平。生物膜流動性變化會影響電子傳遞和偶聯(lián)磷酸化的進(jìn)行。Hackenbrock(1981)提出,呼吸鏈的電子轉(zhuǎn)移是依賴于該鏈組份的側(cè)向擴(kuò)散與分子相互碰撞而實(shí)現(xiàn)的。這就要求線粒體膜有合適的流動性。Slarter等(1985)提出“碰撞假說”,即電子傳遞和偶聯(lián)磷酸化過程均依賴呼吸鏈成分和ATP酶的碰撞過程。本研究結(jié)果提示,?;撬峥捎行б种萍毙赃\(yùn)動后心肌線粒體膜過氧化脂質(zhì)增加,從而減少過氧化產(chǎn)物MDA進(jìn)入膜雙層結(jié)構(gòu)的水相,與膜蛋白、膜脂上的NH2交聯(lián)形成Schiff's堿而降低膜流動性,保護(hù)多種膜蛋白的脂微環(huán)境,充分發(fā)揮生物膜的各種生理功能,進(jìn)而減輕運(yùn)動性疲勞和促進(jìn)運(yùn)動后疲勞的消除。 近年來,有關(guān)細(xì)胞鈣離子化謝對機(jī)體機(jī)能影響的研究十分活躍。大量醫(yī)學(xué)和生物學(xué)研究表明,細(xì)胞鈣代謝紊亂是引起機(jī)能異常的重要原因[24,25]。心肌細(xì)胞肌漿網(wǎng)和線粒體對細(xì)胞內(nèi)鈣離子的調(diào)控起著重要的作用。本研究以心肌為材料,觀察了急性運(yùn)動后線粒體鈣含量及SR ca2+-ATPase活性和攝鈣率的變化情況,并研究了牛磺酸對此變化的影響。結(jié)果表明,急性運(yùn)動后未見心肌線粒體鈣含量發(fā)生顯著變化,而SR c2+-ATPase活性和攝鈣率在負(fù)重游泳后即刻明顯下降,分別比對照組下降36%和43%。肌漿網(wǎng)是細(xì)胞內(nèi)的鈣貯存庫,它通過對Ca2+的釋放和聚集,調(diào)節(jié)肌細(xì)胞的收縮和舒張。肌肉興奮時,SR儲存的鈣游離到肌漿,當(dāng)肌漿Ca2+達(dá)到10-7~10-5M時,引起骨骼肌收縮;興奮終止,SR將游離于胞漿的Ca2+重新攝取,胞漿Ca2+下降,肌肉舒張。因此肌漿網(wǎng)可能是肌肉疲勞的一個位點(diǎn)。Byrd(1989)報道,馬在一次大強(qiáng)度運(yùn)動后,肌漿網(wǎng)攝Ca2+能力下降49%,同時SR ca2+-Mg2+-ATPase活性下降57%[26]。Sembrowich(1977)發(fā)現(xiàn)大鼠力竭運(yùn)動后肌漿網(wǎng)攝鈣率明顯下降[27]。Pierce(1984)等也觀察到:力竭運(yùn)動顯著改變了肌漿網(wǎng)對鈣的運(yùn)轉(zhuǎn)[9]。所有這些報道均與本研究的結(jié)果相一致。從理論上分析,大鼠運(yùn)動后SR ca2+-ATPase活性的下降和攝鈣率的降低,必然使輸回SR的Ca2+量減少,速度減慢,使肌動蛋白和肌球蛋白形成的橫橋分離減慢,影響肌肉的放松并造成細(xì)胞漿中游離Ca2+濃度增加,后者可以通過激活蛋白水解酶和磷酸酶等造成肌纖維蛋白的降解,進(jìn)而引起肌肉收縮機(jī)能的下降,導(dǎo)致肌肉疲勞。本研究發(fā)現(xiàn),給予?;撬岬拇笫箅m然在急性運(yùn)動后即刻SR ca2+-ATPase活性和攝鈣率也有明顯的降低,但降低幅度明顯低于單純運(yùn)動組大鼠,僅下降18%和27%。提示?;撬釋毙赃\(yùn)動后造成的SR功能降低有明顯的保護(hù)作用,這可能是其發(fā)揮抗運(yùn)動性疲勞作用的又一重要原因。作者單位:張宜龍 陳吉棣 (北京醫(yī)科大學(xué)第三醫(yī)院運(yùn)動醫(yī)學(xué)研究所 北京 100083) * 本課題為國家體育總局資助項(xiàng)目 4.參考文獻(xiàn) ?。?]張宜龍,陳吉棣,劉曉鵬,等.牛磺酸對人體自由基代謝水平和運(yùn)動能力的影響.中國運(yùn)動醫(yī)學(xué)雜志.1998,17(4):376. ?。?]Nicholles DG,et al.Mitochandrial calcium transport.FEBS LETT1983;111:261-268. ?。?]Jones LR,et al.Separation of visicles of cardiac sarcoplasmic reticulumcomparative biochemical analysis of component activities.J.Biol.Chem.1979;254:530-539. 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